谷胱甘肽过氧化物酶（GSH-Px）测定试剂盒（微量法）

自备仪器和用品：                                                     

低温离心机、水浴锅、可调节移液器、酶标仪、96孔板、和蒸馏水。

试剂组成和配置：                                                      

试剂一：液体120mL×1瓶，室温保存。

试剂二：粉剂×1瓶，4℃保存。

试剂三：液体10μL×1支，-20℃保存。

试剂四：液体200μL×1瓶，4℃保存。

粗酶液提取：                                                         

1.       组织：按照组织质量（g）：试剂一体积(mL)为1：5~10的比例（建议称取约0.1g组织，加入1mL试剂一）进行冰浴匀浆。8000g，4℃离心10min，取上清置冰上待测。

2.       细菌、真菌：按照细胞数量（10⁴个）：试剂一体积（mL）为500~1000：1的比例（建议500万细胞加入1mL试剂一），冰浴超声波破碎细胞（功率300w，超声3秒，间隔7秒，总时间3min）；然后8000g，4℃，离心10min，取上清置于冰上待测。

3.       血清等液体：直接测定。

GSH-Px测定操作：                                                   

1. 酶标仪预热30 min，调节波长到340 nm。

2. 混合试剂在25℃或者37℃（哺乳动物）水浴中预热30min。

3. 混合试剂配制：临用前，在试剂二中加入试剂一20 mL，充分震荡溶解后加入全部试剂三，混匀。（当天用完）

4. 试剂四的稀释：吸取21.5μL试剂四，加入5mL蒸馏水充分混匀，临用前配制，配制好的试剂当天使用。

5. 测定管：依次在96孔板中加入20μL上清液、160μL预热的混合试剂、20μL稀释后的试剂四，迅速混匀后于340nm处测定第30 s和第210s的吸光值，分别记为A1和A2。△A测定管= A1﹣A2。

GSH-Px活性计算：                                                   

使用96孔板测定的计算公式如下

(1). 按蛋白浓度计算

GSH-Px活力单位定义：一定温度中，每mg蛋白每分钟催化1nmol NADPH氧化为1个酶活单位。

GSH-Px (nmol/min/mg prot)=[△A÷ε÷d×V反总×10⁹]÷（Cpr×V样）÷T

=1072×△A÷Cpr

(2). 按样本质量计算

GSH-Px活力单位定义：一定温度中，每g样本每分钟催化1nmol NADPH氧化为1个酶活单位。

GSH-Px (nmol/min/g 鲜重)=[△A÷ε÷d×V反总×10⁹]÷(W×V样÷V样总)÷T

=1072×△A÷W

（3）按细胞数量计算

活性单位定义：一定温度中，每10⁴个细胞每分钟催化1nmol NADPH氧化为1个酶活单位。

GSH-Px (nmol/min/10⁴ cell)= [△A÷ε÷d×V反总×10⁹]÷(细胞数量×V样÷V样总)÷T

=1072×△A÷细胞数量

（4）按液体体积计算

活性单位定义：一定温度中，每毫升液体每分钟催化1nmol NADPH氧化为1个酶活单位。

GSH-Px (nmol/min/mL)=[△A÷ε÷d×V反总×10⁹]÷V样÷T

=1072×△A

ε：NADPH摩尔消光系数6.22×10³L/mol/cm；d：96孔板光径，0.5 cm；V反总：反应体系总体积，200μL=2×10^-4 L；10⁶：1 mol=1×10⁶μmol； Cpr：上清液蛋白浓度（mg/mL）；W ：样品质量；V样：加入反应体系中上清液体积，20μL =2×10^-2 mL；V样总：提取液体积，1 mL；T：反应时间，3 min。

注意事项：                                                          

（1）样品处理等过程均需要在冰上进行，且须在当日测定酶活力；

（2）混合试剂和底物液须临用前配制，配完后置于冰上，当天使用完；

（3）测定过程操作须迅速；

（4）细胞中GSH-Px活性测定时，细胞数目须在300万-500万之间，细胞中GSH-Px的提取时可加试剂一后研磨或超声波处理，不能用细胞裂解液处理细胞。