谷胱甘肽还原酶（GR）测定试剂盒（微量法）

自备仪器和用品：                                                     

低温离心机、水浴锅、移液器、紫外分光光度计/酶标仪、微量石英比色皿/96孔板、和蒸馏水

试剂组成和配置：                                                      

试剂一：液体120mL×1瓶，4℃保存。

试剂二：粉剂×2支，-20℃保存。临用前加入1.2mL蒸馏水，混匀。

试剂三：粉剂×2支，-20℃保存。临用前加入0.6mL蒸馏水，混匀。

粗酶液提取：                                                         

1.       组织：按照组织质量（g）：试剂一体积(mL)为1：5~10的比例（建议称取约0.1g组织，加入1mL试剂一）进行冰浴匀浆。8000g，4℃离心15min，取上清，置冰上待测。

2.       细菌、真菌：按照细胞数量（10⁴个）：试剂一体积（mL）为500~1000：1的比例（建议500万细胞加入1mL试剂一），冰浴超声波破碎细胞（功率300w，超声3秒，间隔7秒，总时间3min）；然后8000g，4℃，离心15min，取上清置于冰上待测。

3.       血清等液体：直接测定。

操作步骤：                                                             

1. 分光光度计/酶标仪预热30 min，调节波长到340 nm，蒸馏水调零。

2. 试剂一置于25℃（普通物质）或者37℃（哺乳动物）中预热30min。

3. 测定管：取微量石英比色皿或96孔板，依次加入10μL试剂三，20μL试剂二，150μL试剂一，20μL上清液，混匀，于340nm迅速测定初始吸光度和180 s吸光度，记为A测1和A测2，△A测定管= A测1﹣A测2。

(注意：

1.加完上清液后必须迅速混匀测定，保证准确测出初始反应速度；

2.当出现初始180s内吸光值不稳定时，可以适当延长反应时间，选取相对稳定的时间段内吸光值变化值；

3.当所测△A测定管的值在零点附近徘徊时，可能原因：（1）样本GR酶活性低，建议浓缩样本后再进行测定；（2）样本GR酶活性过高，吸光值变化区间过小无法准确测出，建议样本稀释2~5倍后再进行测定)

计算公式：                                                            

a.使用微量石英比色皿测定的计算公式如下

(1). 按蛋白浓度计算

活性单位定义：在一定温度中，pH8.0条件下，每毫克蛋白每分钟催化1nmol NADPH氧化为1个酶活单位。

GR酶活(nmol/min/mg prot)= [ △A测定管÷ε÷d×V反总×10⁹]÷[Cpr×V样]÷T

= 536×△A测定管÷Cpr

(2). 按样本质量计算

活性单位定义：在一定温度中，pH8.0条件下，每克样本每分钟催化1nmol NADPH氧化为1个酶活单位。

GR酶活(nmol/min/g 鲜重)= [ △A测定管÷ε÷d×V反总×10⁹] ÷(W×V样÷V样总)÷T

= 536×△A测定管÷W

(3) 按细胞数量计算

活性单位定义：在一定温度中，pH8.0条件下，每10⁴个细胞每分钟催化1nmol NADPH氧化为1个酶活单位。

GR酶活(nmol/min/10⁴ cell)= [ △A测定管÷ε÷d×V反总×10⁹] ÷(细胞数量×V样÷V样总)÷T           

= 536×△A测定管÷细胞数量

（4）按液体体积计算

活性单位定义：在一定温度中，pH8.0条件下，每毫升液体每分钟催化1nmol NADPH氧化为1个酶活单位。

GR酶活(nmol/min/mL)= [ △A测定管÷ε÷d×V反总×10⁹]÷×V样÷T

= 536×△A测定管

ε：NADPH摩尔消光系数6.22×10³L/mol/cm；d：比色皿光径，1 cm；V反总：反应体系总体积，200μL=2×10^-4 L；10⁶：1 mol=1×10⁶μmol； Cpr：上清液蛋白浓度（mg/mL）；W ：样品质量；V样：加入反应体系中上清液体积，20μL =2×10^-2 mL；V样总：提取液体积，1 mL；V样总：提取液体积，1 mL；T：反应时间，3 min。

b.使用96孔板测定的计算公式如下

(1). 按蛋白浓度计算

活性单位定义：在一定温度中，pH8.0条件下，每毫克蛋白每分钟催化1nmol NADPH氧化为1个酶活单位。

GR酶活(nmol/min/mg prot)= [ △A测定管÷ε÷d×V反总×10⁹]÷[Cpr×V样]÷T

= 1072×△A测定管÷Cpr

(2). 按样本质量计算

活性单位定义：在一定温度中，pH8.0条件下，每克样本每分钟催化1nmol NADPH氧化为1个酶活单位。

GR酶活(nmol/min/g 鲜重)= [ △A测定管÷ε÷d×V反总×10⁹] ÷(W×V样÷V样总)÷T

= 1072×△A测定管÷W

(3) 按细胞数量计算

活性单位定义：在一定温度中，pH8.0条件下，每10⁴个细胞每分钟催化1nmol NADPH氧化为1个酶活单位。

GR酶活(nmol/min/10⁴ cell)= [ △A测定管÷ε÷d×V反总×10⁹] ÷(细胞数量×V样÷V样总)÷T           

=1072×△A测定管÷细胞数量

（4）按液体体积计算

活性单位定义：在一定温度中，pH8.0条件下，每毫升液体每分钟催化1nmol NADPH氧化为1个酶活单位。

GR酶活(nmol/min/mL)= [ (△A测定管-△A空白管)÷ε÷d×V反总×10⁹]÷×V样÷T

=1072×△A测定管

ε：NADPH摩尔消光系数6.22×10³L/mol/cm；d：96孔板光径，0.5 cm；V反总：反应体系总体积，200μL=2×10^-4 L；10⁶：1 mol=1×10⁶μmol； Cpr：上清液蛋白浓度（mg/mL）；W ：样品质量；V样：加入反应体系中上清液体积，20μL =2×10^-2 mL；V样总：提取液体积，1 mL；V样总：提取液体积，1 mL；T：反应时间，3 min。

注意事项：                                                           

（1）样品处理等过程均需要在冰上进行，且须在当日测定酶活力，匀浆液避免反复冻融；

（2）试剂二和试剂三须现配现用，配制完后，置于冰上，未使用完的4℃保存，三天内使用完。

（3）测定前须先用1～2个样做预实验，哺乳动物组织一般须用试剂一稀释2～5倍。

（4）细胞中GR活性测定时，细胞数目须在300万-500万之间，细胞中GR的提取时可加试剂一后研磨或超声波处理，不能用细胞裂解液处理细胞。